4cl酶反应体系使用液相检测的一些问题

本人萌新，最近在做4cl家族基因的重组蛋白和五种底物酚酸反应的实验，反应体系中存在0.6mM CoA、5mM ATP、6mM MgCl2、0.2M Tris-Hcl、0.2mM 酚酸底物以及浓度不明的重组蛋白。配制了7种不同PH的Tri... [图片]

本人萌新，最近在做4cl家族基因的重组蛋白和五种底物酚酸反应的实验，反应体系中存在0.6mM CoA、5mM ATP、6mM MgCl2、0.2M Tris-Hcl、0.2mM 酚酸底物以及浓度不明的重组蛋白。配制了7种不同PH的Tris-Hcl缓冲液（PH=4、5、6、7.1、7.5、8.1、8.9），体系反应10分钟后，沸水煮沸10分钟失活，现使用对香豆酸和酶反应，反应后经12000RAM离心2min后用0.22um过滤头过滤，进样10ul，使用的是XDB-C18的柱子，waters2695的色谱仪，流动相为A1%乙酸和B纯乙腈，洗脱梯度0~5min A：B=95:5,5-35min A：B=25：75，36-5,5min A:B=95:5，56-65min A：B=5:95 进样后发现，除了PH=7.1的样品外其他的样品都没有底物（对-香豆酸）峰，并且所有样品都没有产物（对-香豆酸辅酶A）峰，能请教一下各位大神，怎么解决这个问题

另外还有一个问题，五种酚酸跑混标的时候，芥子酸和阿魏酸总是分不开，大神有没有什么好的方法将他们分开（尽量不使用缓冲液体系作为流动相）

，多谢各位了